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构建在不同组织和病理状态下的成纤维细胞单细胞RNA测序图谱
图 1. 健康和疾病状态下的跨组织成纤维细胞图谱 (A) 研究设计和分析流程的示意图。 (B) 按病理状况(x轴)和器官(y轴)汇总的分析数据集。符号代表不同类型的数据。侧边栏显示每个器官中的成纤维细胞总数,特定癌症类型中我们的内部数据的比例有注释。注意,"发炎"一词广义上指代炎症和纤维化等病理状况以简化表达。 (C) 成纤维细胞群(FCs)的统一流形近似和投影(UMAP)可视化。特定的组别用虚线圈出。 (D) 成纤维细胞功能签名13在各个FCs中的表达模式。虚线代表所有FCs的平均签名分数。 (E) 热图显示每个成纤维细胞群中表达最高的前100个基因的表达模式,标志基因用突出显示。表达,Z分数标准化平均表达。 (F) 点图显示特定组织中所有成纤维细胞内FCs的出现频率,大小和颜色表示。右侧的饼图显示各种组织中簇丰度的分布,颜色代表不同频率基础的丰度组。 (G) 热图显示通过Ro/e(STAR方法)的簇的表型偏好。另见图 S1 和 S2 以及表 S1、S2 和 S3。
慢性炎症和癌症期间纤维母细胞细胞室的重塑
图 2. 在炎症和癌变组织中成纤维细胞细胞室的重塑(A)箱形图比较了不同病理状态下特定成纤维细胞群的比例(颜色表示)。
解析成纤维细胞的异质性和它们的细胞来源类型
图3。肌成纤维细胞亚群及其调控因子的谱系关系(A)点图显示肌成纤维细胞亚群的标记基因表达水平。点的大小表示每个簇中表达细胞的分数,颜色表示归一化后的表达水平。 (B)泛组织成纤维细胞簇的UMAP表示,叠加了RNA速度向量。 (C)在不同癌症类型的代表性组织切片上进行多重免疫组化染色,显示PDGFRb+MCAM+周细胞和MCAM+LRRC15+成纤维细胞在血管和肿瘤区域的位置。白色五角星标记MCAM+LRRC15+成纤维细胞。虚线突出显示围绕血管的周细胞。 (D)不同成纤维细胞簇(行)之间的平均通路活性(列)。黑色虚线表示簇特异性平均通路得分。 (E)森林图显示c04特征表达与总生存期的关联。红色表示泛癌危险比。p值来源于Cox比例风险模型,年龄、性别和肿瘤分期校正(*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001)。 (F)箱形图显示来自各种组织的肿瘤和炎症样本中肌成纤维细胞簇的比例。 (G)热图显示肌成纤维细胞亚群之间的平均调节子活性得分。 (H)热图显示在LRRC15+肌成纤维细胞(c04)中高表达的转录因子的调节子活性得分。 (I)预测c04特征基因(右)作为转录因子调节子的靶基因(左)。 (J)热图显示根据NicheNet分析确定的顶级配体对肌成纤维细胞特征基因的调控潜力。另见图S3和表S2。
成纤维细胞前体的性质与可塑性
图4. 成纤维细胞祖细胞的特征及其与患者生存的关系(A)火山图显示c05和c03之间差异表达基因。经调整的p值<0.01(威尔科克斯秩和检验)和log2(倍数变化)>0.25的基因被着色编码。(B)条形图显示两个成纤维细胞簇的富集通路。(C)箱线图比较六种癌症类型中相邻正常和肿瘤样本的成纤维细胞亚群比例。威尔科克斯检验。(D)mIHC染色在代表性组织切片上显示PI16+成纤维细胞(c05)和FAP+LRRC15+成纤维细胞(c04)细胞的位置及其在正常、相邻正常和肿瘤区域的位置。白色矩形分别突出显示PI16+和FAP+LRRC15+成纤维细胞,并在右侧以更高的放大倍数显示。虚线突出显示相邻正常区域中正常和肿瘤区域的边界。(E)箱线图显示两种癌症类型相同大小的不同组织区域中PI16+成纤维细胞和FAP+LRRC15+成纤维细胞的比例。每个点代表一个切片(n=11,每种癌症类型各有2名患者)。t检验的p值。(F)热图显示肿瘤样本(列)中成纤维细胞簇(行)的频率。通过层次聚类和成纤维细胞组成的堆叠条形图显示肿瘤亚型,右侧显示每个簇的成纤维细胞频率分布的箱线图。(G)TCGA癌症患者的Kaplan-Meier总生存曲线,按肌成纤维细胞(c04)和成纤维细胞祖细胞(c05和c03)的基因签名表达分类。p值是通过年龄、性别和阶段的Cox回归模型计算的。(H)森林图描绘了基于成纤维细胞的两组患者对总生存的影响。参见附图S4和S5及表S4。
PI16+ 成纤维细胞和 LRRC15+ 成纤维细胞在不同癌症类型中参与空间上不同的多细胞模块
图5.在不同的癌症类型中,成纤维细胞亚群参与空间背景下不同的多细胞群落(A)热图显示不同癌症类型肿瘤样本之间细胞类型比例的成对皮尔逊相关性。细胞模块由顶部的彩色框标出。(B)点图显示根据TME亚型分类的样本的TME相关特征评分的表达水平。(C)点图显示根据TME亚型分类的样本的特定标记基因的表达。(D–F)利用cell2location方法将细胞类型映射到不同癌症类型的空间转录组学(ST)幻灯片上,分别是(D)CM1,(E)CM6和(F)CM7。所有细胞类型的估计细胞丰度由颜色强度表示(左上角),以及每个细胞类型单独表示(右上角)。密度图展示了两个簇之间观察值的库尔巴克-莱布勒(KL)散度与零分布的比较(底部)。通过排列测试确定了经验p值。另见图S5和S6及表S1和S5。
图6.成纤维细胞与免疫细胞亚群之间的细胞间通讯(A)代表性肺肿瘤标本中的多重免疫组化染色,显示CD68+SPP1+巨噬细胞(虚线圆圈)和FAP+LRRC15+成纤维细胞(星号)在单个或合并面板中的空间共定位。(B)和弦图显示特定成纤维细胞群与免疫细胞之间具有统计学意义的关键配体-受体相互作用(p < 0.05)。颜色表示不同的细胞类型,形状代表相互作用的 direction。(C)空间特征图描绘了成纤维细胞亚群高区域(顶部一行)以及每个空间转录组切片中配体-受体对的基因表达(下面三行)。(D)空间特征图显示各种ST切片中功能签名的得分。(E)箱线图显示选定的配体-受体对在成纤维细胞亚群高区域(紫色和青色)和其他区域(灰色)在ST切片中的共表达水平。仅在成纤维细胞亚群高区域显著上调的配体-受体对显示(p < 0.05, Wilcoxon检验)。(F)点图比较SPP1刺激条件下样本与对照组样本的功能签名得分。单侧配对t检验。(G)在无MMP1+成纤维细胞、DN对照组存在的情况下,CD4+CD25+ T细胞的迁移。迁移百分比是下室T细胞总数与上下室细胞总数之比。每个点代表一个独立实验(n ≥ 6)。∗p < 0.05, ∗∗p < 0.01, ∗∗∗p < 0.001, ∗∗∗∗p < 0.0001, 学生t检验。(H)无CCL2、CXCL16或ICAM1的情况下,CD4+CD25+ T细胞的迁移。每个点代表一个独立实验(n = 5)。学生t检验。另见图S6-S8和表S6。
MMP1+成纤维细胞有助于形成免疫抑制性细胞生态位和免疫治疗抵抗
图7.本研究中纤维细胞特征、动态和空间生态位的总结 图形摘要描绘了纤维细胞亚群的动态相互作用和过渡过程。(A) c05-PI16纤维细胞主要存在于邻近的正常组织中,当暴露于IL1β和TGF-β的组合时,可以转变为c16-SFRP2原肌成纤维细胞。(B) c05纤维细胞在招募CD8记忆T细胞到血管周围生态位中发挥关键作用,这一过程是通过CCL5-ACKR4轴介导的。(C) c03-COL15A1纤维细胞在靠近基底膜的正常组织中占主导地位,当暴露于IFNs和TGF-β刺激时,具有转化为c19-MMP1纤维细胞的能力。(D) c19纤维细胞通过复杂的配体-受体相互作用(如ICAM1-IL2RA),积极参与招募和保留免疫抑制性Tregs和髓系细胞(如LAMP3+ DCs),并通过分泌TGFB1和IL11促进免疫抑制环境。(E) 在TGFβ的影响下,c16、c11和c19纤维细胞亚群均能分化为c04-LRRC15肌成纤维细胞。(F) 这些c04-LRRC15纤维细胞反过来又参与吸引SPP1+巨噬细胞,通过SPP1-ITGAV/ITGB1等相互作用形成一个免疫排除的细胞生态位。参见附图S8。
研究的局限性
主要联系人
材料可用性
数据和代码的可获得性
关键资源表
实验模型与研究对象详情
人类标本
方法细节
单细胞RNA测序数据生成
患者来源成纤维细胞的分离与培养
CD4+CD25+ T细胞的分离
CD4+CD25+ T细胞上FOXP3表达的量化
Transwell迁移实验
体外刺激成纤维细胞
人体组织的多色免疫组化及数据分析
空间转录组数据生成
批量RNA测序与处理
实时定量聚合酶链反应
单细胞RNA-seq数据收集、预处理以及成纤维细胞的识别
数据整合与成纤维细胞亚群注释
基因特征评分的计算
纤维母细胞簇在组织和表型中的分布
基因集富集分析
PROGENy 的通路活性预测
基因调控网络分析
成纤维细胞亚群保守特征基因的鉴定
配体预测分析
成纤维细胞系谱轨迹推断
扩散伪时间分析
使用CellTypist预测免疫细胞类型
在成纤维细胞与免疫细胞之间识别多细胞模块
细胞-细胞交互分析
空间转录组数据的分析
TCGA RNA测序数据分析
定量与统计分析
统计分析
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